ЦИТОСКЕЛЕТНЫЙ РЕГУЛЯТОР ЗИКСИН СТИМУЛИРУЕТ ТРАНСЛОКАЦИЮ ЭФФЕКТОРА HIPPO-СИГНАЛЬНОГО ПУТИ – YAP – В ЯДРА КЛЕТОК ЭМБРИОНА ШПОРЦЕВОЙ ЛЯГУШКИ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

На сегодняшний день в научной литературе представлено ограниченное число данных о взаимосвязи механотрансдукции, связанной с изменениями уровня зиксина, и биохимической передачи сигнала транскрипционного фактора YAP. Исследования в этой области предполагают, что стрессиндуцированная реорганизация активового цитокелета, опосредованная зиксином, может играть ключевую роль в механотрансдукции YAP. Вместе с тем эти работы не предоставляют четких результатов относительно влияния зиксина на распределение YAP между ядром и цитоплазмой и регуляцию его активности. В данной статье мы исследовали влияние зиксина на транслокацию эффектора Hippo-сигнального пути – YAP – в ядра клеток раннего эмбриона шпорцевой лягушки Xenopus laevis. Анализ ядерно-цитоплазматического распределения YAP с помощью иммуноблоттинга и иммуногистохимического окрашивания в сочетании с подавлением трансляции эндогенной мРНК зиксина морфолиновыми антисмысловыми олигонуклеотидами и сверхэкспрессией синтетической мРНК зиксина выявил стимулирующее влияние зиксина на транслокацию YAP в ядра клеток эмбрионов на стадии гаструлы, но не на стадиях бластулы и нейрулы. Аналогичный вывод был сделан в результате анализа влияния тех же изменений концентрации зиксина на экспрессию YAP-зависимого люциферазного репортера. На основании результатов нашего исследования, а также принимая во внимание известную роль зиксина как одного из механотрансдукторов, можно предположить, что этот белок участвует в механозависимой регуляции сигнального пути Hippo в эмбриональном развитии X. laevis на стадии гаструляции.

Об авторах

Е. А Паршина

ФГБУН ГНЦ "Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова" РАН

Email: lena_parshina5@mail.ru
Москва, Россия

Е. Е Орлов

ФГБУН ГНЦ "Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова" РАН

Москва, Россия

Е. Е Воронежская

ФГБУН "Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова" РАН

Москва, Россия

Н. Ю Мартынова

ФГБУН ГНЦ "Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова" РАН

Москва, Россия

А. Г Зарайский

ФГБУН ГНЦ "Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова" РАН; ФГБУН "Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова" РАН; Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова

Москва, Россия; Москва, Россия; Москва, Россия

Список литературы

  1. Suchyna T., Sachs F. // J. Physiol. Lond. 2007. V. 581. P. 369–387. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2006.125021
  2. Matheson L.A., Maksym G.N., Santerre J.P., Labow R.S. // J. Biomed. Mater. Res. A. 2006. V. 76. P. 52–62. https://doi.org/10.1002/jbm.a.30448
  3. Huang C. // Clin. Exp. Hypertens. 2014. V. 2. P. 1009.
  4. Delmas P. // Cell. 2004. V. 118. P. 145–148. https://doi.org/10.1016/j.cell.2004.07.007
  5. Hirata H., Tatsumi H., Sokabe M. // J. Cell Sci. 2008. V. 121. P. 2795–2804. https://doi.org/10.1242/jcs.030320
  6. Wang Y., Gilmore T.D. // Biochim. Biophys. Acta. 2003. V. 1593. P. 115–120. https://doi.org/10.1016/s0167-4889(02)00349-x
  7. Yoshigi M., Hoffman L.M., Jensen C.C., Yost H.J., Beckerle M.C. // J. Cell Biol. 2005. V. 171. P. 209–215. https://doi.org/10.1083/jcb.200505018
  8. Ngu H., Feng Y., Lu L., Oswald S.J., Longmore G.D., Yin F.C. // Ann. Biomed. Eng. 2010. V. 38. P. 208–222. https://doi.org/10.1007/s10439-009-9826-7
  9. Janmey P.A., Fletcher D.A., Reinhart-King C.A. // Physiol. Rev. 2020. V. 100. P. 695–724. https://doi.org/10.1152/physrev.00013.2019
  10. Piccolo S., Dupont S., Cordenonsi M. // Physiol. Rev. 2014. V. 94. P. 1287–1312. https://doi.org/10.1152/physrev.00005.2014
  11. Janmey P.A., Wells R.G., Assoian R.K., McCulloch C.A. // Differentiation. 2013. V. 86. P. 112–120. https://doi.org/10.1016/j.diff.2013.07.004
  12. Mohri Z., Del Rio Hernandez A., Krams R. // J. Thorac. Dis. 2017. V. 9. P. E507–E509. https://doi.org/10.21037/jtd.2017.03.179
  13. Basu S., Totty N.F., Irwin M.S., Sudol M., Downward J. // Mol. Cell. 2003. V. 11. P. 11–23. https://doi.org/10.1016/s1097-2765(02)00776-1
  14. Dupont S., Morsut L., Aragona M., Enzo E., Giulitti S., Cordenonsi M., Zanconato F., Le Digabel J., Forcato M., Bicciato S., Elvassore N., Piccolo S. // Nature. 2011. V. 474. P. 179–183. https://doi.org/10.1038/nature10137
  15. Yu F.X., Zhao B., Panupinthu N., Jewell J.L., Lian I., Wang L.H., Zhao J., Yuan H., Tumaneng K., Li H., Fu X.D., Mills G.B., Guan K.L. // Cell. 2012. V. 150. P. 780–791. https://doi.org/10.1016/j.cell.2024.02.007
  16. Ma B., Cheng H., Gao R., Mu C., Chen L., Wu S., Chen Q., Zhu Y. // Nat. Commun. 2016. V. 7. P. 11123. https://doi.org/10.1038/ncomms11123
  17. Zhou J., Zeng Y., Cui L., Chen X., Stauffer S., Wang Z., Yu F., Lele S.M., Talmon G.A., Black A.R., Chen Y., Dong J. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2018. V. 115. P. E6760–E6769. https://doi.org/10.1073/pnas.1800621115
  18. Gaspar P., Holder M.V., Aerne B.L., Janody F., Tapon N. // Curr. Biol. 2015. V. 25. P. 679–689. https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.01.010
  19. Aragona M., Panciera T., Manfrin A., Giulitti S., Michielin F., Elvassore N., Dupont S., Piccolo S. // Cell. 2013. V. 154. P. 1047–1059. https://doi.org/10.1016/j.cell.2013.07.042
  20. Wen S.M., Wen W.C., Chao P.G. // Acta Biomater. 2022. V. 152. P. 313–320. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2022.08.079
  21. Zhang S., Chong L.H., Woon J.Y.X., Chua T.X., Cheruba E., Yip A.K., Li H.Y., Chiam K.H., Koh C.G. // Commun. Biol. 2023. V. 6. P. 62. https://doi.org/10.1038/s42003-023-04421-0
  22. Parshina E.A., Eroshkin F.M., Orlov E.E., Gyoeva F.K., Shokhina A.G., Staroverov D.B., Belousov V.V., Zhigalova N.A., Prokhortchouk E.B., Zaraisky A.G., Martynova N.Y. // Cell Rep. 2020. V. 33. P. 108396. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2020.108396
  23. Harland R., Gerhart J. // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 1997. V. 13. P. 611–667. https://doi.org/10.1146/annurev.cellbio.13.1.611
  24. Nelson C.M. // Annu. Rev. Biomed. Eng. 2022. V. 24. P. 307–322. https://doi.org/10.1146/annurev-bioeng-060418-052527
  25. Concha M.L., Adams R.J. // Development. 1998. V. 125. P. 983–994. https://doi.org/10.1242/dev.125.6.983
  26. Huang Y., Winklbauer R. // Wiley Interdiscip. Rev. Dev. Biol. 2018. V. 7. P. e325. https://doi.org/10.1002/wdev.325
  27. Moon L.D., Xiong F. // Semin. Cell Dev. Biol. 2022. V. 130. P. 56–69. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2021.09.009
  28. Inoue Y., Suzuki M., Watanabe T., Yasue N., Tateo I., Adachi T., Ueno N. // Biomech. Model. Mechanobiol. 2016. V. 15. P. 1733–1746. https://doi.org/10.1007/s10237-016-0794-1
  29. Scobeyeva V.A. // Int. J. Dev. Biol. 2006. V. 50. P. 315–322. https://doi.org/10.1387/ijdb.052062vs
  30. Feroze R., Shawky J.H., von Dassow M., Davidson L.A. // Dev. Biol. 2015. V. 398. P. 57–67. https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2014.11.011
  31. Martynova N.Y., Parshina E.A., Zaraisky A.G. // STAR Protoc. 2021. V. 2. P. 100552. https://doi.org/10.1016/j.xpro.2021.100552
  32. Cheng Y., Mao M., Lu Y. // Biomark. Res. 2022. V. 10. P. 34. https://doi.org/10.1186/s40364-022-00365-5
  33. Martynova N.Y., Eroshkin F.M., Ermolina L.V., Ermakova G.V., Korotaeva A.L., Smurova K.M., Gyoeva F.K., Zaraisky A.G. // Dev. Dyn. 2008. V. 237. P. 736–749. https://doi.org/10.1002/dvdy.21471
  34. Ivanova E.D., Parshina E.A., Zaraisky A.G., Martynova N.Y. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2024. V. 50. P. 723–732. https://doi.org/10.1134/s1068162024030026

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025