Гематологические показатели австралийского красноклешневого рака Сherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae) при экспозиции на воздухе

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследовано влияние экспозиции на воздухе на гематологические показатели австралийского красноклешневого рака Сherax quadricarinatus Von Martens 1868. Гемолимфу отбирали сразу после извлечения рака из воды через 2, 4, 8 ч экспозиции на воздухе и спустя 24 и 72 ч после возращения в воду. Определены общее число гемоцитов (ОЧГ), гемограмма, концентрация общего белка и гемоцианина. Рассмотрена динамика полученных гематологических показателей во временном аспекте: ОЧГ и доля гранулоцитов увеличивалась на протяжении всей экспозиции на воздухе, доля агранулоцитов и содержание общего белка и гемоцианина статистически достоверно не изменялись, доля полугранулоцитов снижалась. После экспозиции на воздухе цвет гемолимфы изменялся с голубоватого с сероватым оттенком на мутный серо-зеленый (отклонение от нормы). Полученные данные свидетельствуют о развитии компенсаторных механизмов и патологических явлений в ответ на стресс, вызванный пребыванием в воздушной среде, позволяют применять их на практике при оценке состояния австралийского красноклешневого рака в процессе транспортировки.

Об авторах

Д. Н. Скафарь

Кубанский государственный университет; Азово-Черноморский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства
и океанографии; Научно-производственный центр “АкваТехБиотоп”

Автор, ответственный за переписку.
Email: skafden@mail.ru
Россия, Краснодар; Россия, Ростов-на-Дону; Россия, Краснодар

О. В. Стрелкова

Кубанский государственный университет; Азово-Черноморский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства
и океанографии

Email: skafden@mail.ru
Россия, Краснодар; Россия, Ростов-на-Дону

Д. В. Шумейко

Международный Таразский инновационный институт им. Ш. Муртазы; Научно-производственный центр “АкваТехБиотоп”

Email: skafden@mail.ru
Казахстан, Тараз; Россия, Краснодар

Список литературы

  1. Александрова E.H., Ковачева Н.П. 2010. Прижизненное определение физиологического статуса десятиногих ракообразных (Сrustacea: Decapoda) по гематологическим показателям // Успехи физиол. наук. Т. 41. № 2. С. 51.
  2. Кладченко Е.С., Андреева А.Ю., Кухарева Т.А. 2022. Влияние краткосрочной ранжированной гипоксии на функциональные и морфологические показатели гемоцитов Тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas (Thunberg, 1793). Журн. эвол. биохим. физиол. Т. 58. № 1. С. 43.
  3. Ковачева Н.П., Александрова Е.Н. 2010. Гематологические показатели как индикаторы физиологического состояния декапод: камчатского краба Paralithodes camtschaticus и речных раков родов Astacus и Pontastacus. М.: ВНИРО.
  4. Лагуткина Л.Ю., Кузьмина Е.Г., Таранина А.А. и др. 2020. Фактологическое обеспечение практик повышения эффективности выращивания тропических пресноводных видов // Вест. Астрахан. гос. тех. ун-та. Сер.: Рыбн. хоз-во. № 2. С. 94. https://doi.org/10.24143/2073-5529-2020-2-94-105
  5. Мартынова М.Г., Быстрова О.М., Парфенов В.Н. 2008. Синтез нуклеиновых кислот и локализация предсердного натрийуретического пептида в гемоцитах речного рака // Цитология. Т. 50. № 3. С. 243.
  6. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. 2011. Влияние транспортного стресса на гематологические показатели речных раков // Зоотехния. Т. 4. С. 27.
  7. Скафарь Д.Н., Шумейко Д.В. 2022. Гемоциты австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus): морфология и гемограмма // Журн. эвол. биохим. и физиол. Т. 58. № 6. С. 507. https://doi.org/10.31857/S0044452922060109
  8. Battison A., Cawthorn R., Horney B. 2003. Classifcation of Homarus americanus hemocytes and the use of diferential hemocyte counts in lobsters infected with Aerococcus viridans var. homari (Gafemia) // J. Invertebr. Pathol. V. 84. P. 177. https://doi.org/10.1016/j.jip.2003.11.005
  9. Beatty S., Ramsay A., Pinder A., Morgan D. 2019. Reservoirs act as footholds for an invasive freshwater crayfish // Pacific Conservation Biol. V. 26. https://doi.org/10.1071/PC19012
  10. Bernardi C., Baggiani L., Tirloni E. et al. 2015. Hemolymph parameters as physiological biomarkers in American lobster (Homarus americanus) for monitoring the effects of two commercial maintenance methods // Fish. Res. V. 161. P. 280. https://doi.org/10.1016/j.fishres.2014.08.013
  11. Chang E.S. 2005. Stressed-out lobsters: crustacean hyperglycemic hormone and stress proteins // Integ. Comp. Biol. V. 45. № 1. P. 43. https://doi.org/10.1093/icb/45.1.43
  12. Cheng W., Liu C., Kuo C. 2003. Effects of dissolved oxygen on hemolymph parameters of freshwater giant prawn Macrobrachium rosenbergii (de Man) // Aquaculture. V. 220. P. 843. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00534-3
  13. Claussen D.L., Hopper R.A., Sanker A.M. 2000. The Effects of Temperature, Body Size, and Hydration State on the Terrestrial Locomotion of the Crayfish Orconectes Rusticus // J. Crustacean Biol. V. 20. № 2. P. 218. https://doi.org/10.1163/20021975-99990033
  14. Coughran J., Leckie S. 2007. Invasion of a New South Wales stream by the Tropical Crayfish, Cherax quadricarinatus (von Martens) // Royal Zoological Society of New South Wales. https://doi.org/10.7882/FS.2007.007
  15. Dong Z., Mao S., Chen Y. et al. 2019. Effects of air-exposure stress on the survival rate and physiology of the swimming crab Portunus trituberculatus // Aquaculture. V. 500. P. 429. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.10
  16. Fotedar S., Tsvetnenko E., Evans L. 2001. Effect of air exposure on the immune system of the rock lobster Panulirus cygnus // Mar. Freshwater Res. V. 52. № 8. P. 1351. https://doi.org/10.1071/MF01098
  17. Grote J.R. 1981. The effect of load on locomotion in crayfish // J. Exp. Biol. V. 92. № 1. P. 277. https://doi.org/10.1242/jeb.92.1.277
  18. Hall M.R., van Ham E.H. 1998. The effects of different types of stress on blood glucose in the giant tiger prawn, Penaeus monodon // J. World Aquacult. Soc. V. 29. № 3. P. 290. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.1998.tb00649.x
  19. Huner J.V., Lindqvist O.V. 1995. Physiological adaptations of freshwater crayfishes that permit successful aquacultural enterprises // Integr. Comp. Biol. V. 35. P. 12. https://doi.org/10.1093/icb/35.1.12
  20. Jackson D.C., Wang T., Koldkjaer P., Taylor E.W. 2001. Lactate sequestration in the carapace of the crayfish Austropotamobius pallipes during exposure in air // J. Exp. Biol. V. 204. № 5. P. 941. https://doi.org/10.1242/jeb.204.5.941
  21. Jones C.M. 1990. The Biology and Aquaculture Potential of the Tropical Freshwater Crayfish, Cherax quadricarinatus. Report No. QI90028. Department of Primary Industries, Queensland, Brisbane, Australia. P. 109.
  22. Jussila, J., Paganini M., Mansfield S., Evans L.H. 1999a. On physiological responses, plasma glucose, total hemocyte counts and dehydration, of marron Cherax tenuimanus (Smith) to handling and transportation under simulated conditions // Freshwater Crayfish. V. 12. P. 154.
  23. Jussila, J., Jago J., Tsvetnenko E., Evans L.H. 1999b. Effects of handling or injury disturbance on total hemocyte counts in western rock lobster (Panulirus cygnus George) // International Symposium on Lobster Health Management, 19–21 September, 1999. Australia, Adelaide. P. 52.
  24. Kerby J.L., Riley SP.D., Kats L.B., Wilson P. 2005. Barriers and flow as limiting factors in the spread of an invasive crayfish (Procambarus clarkii) in Southern California streams // Biol. Conserv. V. 126. P. 402. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2005.06.020
  25. Kouba A., Tíkal J., Císar P. et al 2016. The significance of droughts for hyporheic dwellers: evidence from freshwater crayfish // Sci. Rep. V. 6. № 26569. https://doi.org/10.1038/srep26569
  26. Leland J.C., Coughran J., Furse J.M. 2012. Further translocation of the Redclaw, Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae), to Lake Ainsworth in northeastern New South Wales, Australia // Crustacean Res. Special Number V. 7. P. 1. https://doi.org/10.18353/crustacea.Special2012.7_1
  27. Lemmers P., Kroon Rvd., Kleef HHv. et al. 2022. Limiting burrowing activity and overland dispersal of the invasive alien red swamp crayfish Procambarus clarkii by sophisticated design of watercourses // Ecol. Engineering. V. 185. № 106787. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2022.106787
  28. Li F., Zheng Z., Li H. et al. 2021. Crayfish hemocytes develop along the granular cell lineage // Sci. Rep. V. 11. № 1. P. 13099. https://doi.org/10.1038/s41598-021-92473-9
  29. Lorenzon S., Giulianini P.G., Martinis M., Ferrero E.A. 2007. Stress effect of different temperatures and air exposure during transport on physiological profiles in the American lobster Homarus americanus // Comp. Biochem. Physiol. Part A.: Mol. Int. Physiol. V. 147. № 1. P. 94. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2006.11.028
  30. Lorenzon S., Giulianini P.G., Libralato S. et al. 2008. Stress effect of two different transport systems on the physiological profiles of the crab Cancer pagurus // Aquaculture. V. 278. P. 156. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.03.011
  31. Lu Y.-P., Zhang X.-X., Zheng P.-H. et al. 2021. Effects of air exposure on survival, histological structure, non-specific immunity and gene expression of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) // Aquacul. Rep. V. 21. P. 100 898. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2021.100898
  32. Malev O., Šrut M., Maguire I. et al. 2010. Genotoxic, physiological and immunological effects caused by temperature increase, air exposure or food deprivation in freshwater crayfish Astacus leptodactylus // Comp. Biochem. Physiol. Part C: Toxicol. and Pharmacol. V. 152. № 4. P. 433. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2010.07.006
  33. Morris S., Callaghan J. 1998. The emersion response of the Australian Yabby Cherax destructor to environmental hypoxia and the respiratory and metabolic responses to consequent air-breathing // J. Comp. Physiol. Part B: Biochem. Syst. Environ. Physiol. V. 168. № 5. P. 389. https://doi.org/10.1007/s003600050158
  34. Morris S., Oliver S. 1999. Circulatory, respiratory and metabolic response to emersion and low temperature of Jasus edwardsii: simulation studies of shipping methods // Comp. Biochem. Physiol. Part A: Mol. Int. Physiol. V. 122. № 3. P. 299. https://doi.org/10.1016/S1095-6433(99)00003-3
  35. Nickerson K.W., Van Holde K.E. 1971. A comparison of molluscan and arthropod hemocyanin. I. Circular dichroism and absorption spectra // Comp. Biochem. Phys. B. V. 39. P. 855. https://doi.org/10.1016/0305-0491(71)90109-X
  36. Paterson B.D., Spanoghe P.T. 1997. Stress indicators in marine decapod crustaceans, with particular reference to the grading of western rock lobsters (Panulirus cygnus) during commercial handling // Mar. Fresh. Res. V. 48. № 8. P. 829. https://doi.org/10.1071/MF97137
  37. Paterson B.D., Spanogle P.T., Davidson G.W. et al. 2005. Prediction survival of western rock lobster Panuluris cygnus, using discriminant analysis of hemolymph parameters taken immediately following simulated handling treatments // New Zealand J. Mar. Freshwater Res. V. 39. № 5. P. 1129. https://doi.org/10.1080/00288330.2005.9517380
  38. Pond C.M. 1975. The role of the “walking legs” in aquatic and terrestrial locomotion of the crayfish Austropotamobius pallipes (Lereboullet) // J. Exp Biol. V. 62. № 2. P. 447. https://doi.org/10.1242/jeb.62.2.447
  39. Powell A., Cowing D.M., Eriksson S.P., Johnson M.L. 2017. Stress response according to transport protocol in Norway lobster, Nephrops norvegicus // Crustacean Res. V. 46. P. 17. https://doi.org/10.18353/crustacea.46.0_17
  40. Puky M. 2014. Invasive Crayfish on Land: Orconectes limosus (Rafinesque, 1817) (Decapoda: Cambaridae) Crossed a Terrestrial Barrier to Move from a Side Arm into the Danube River at Szeremle, Hungary // Acta Zoologica Bulgarica. V. 7. P. 143.
  41. Qing Li., He B., Chen Y. et al. 2022. Factors Inducing the Crayfish Procambarus clarkii Invasion and Loss of Diversity in Caohai Wetland // Inland Water Biol. V. 15. P. 446. https://doi.org/10.1134/S199508292204040X
  42. Ramalho R.O., Anastácio P.M. 2015. Factors inducing overland movement of invasive crayfish (Procambarus clarkii) in a ricefield habitat // Hydrobiologia. V. 746. P. 135. https://doi.org/10.1007/s10750-014-2052-9
  43. Sequeira T., Tavares D., Arala-Chaves M. 1996. Evidence for circulating hemocyte proliferation in the shrimp Penaeus japonicas // Develop. Comp. Immunol. V. 20. № 2. P. 97. https://doi.org/10.1016/0145-305x(96)00001-8
  44. Söderhäll I., Bangyeekhun E., Mayo S., Söderhäll K. 2003. Hemocyte production and maturation in an invertebrate animal; proliferation and gene expression in hematopoietic stem cells of Pacifastacus leniusculus // Develop. Comp. Immunol. V. 27. № 8. P. 661. https://doi.org/10.1016/s0145-305x(03)00039-9
  45. Souty-Grosset C., Anastácio P.M., Aquiloni L. et al. 2016. The red swamp crayfish Procambarus clarkii in Europe: impacts on aquatic ecosystems and human well-being // Limnologica. V. 58 P. 78. https://doi.org/10.1016/j.limno.2016.03.003
  46. Speed S.R., Baldwin J., Wong R.J., Wells R.M.G. 2001. Metabolic characteristics of muscles in the spiny lobster, Jasus edwardsii, and responses to emersion during simulated live transport // Comp. Biochem. Physiol. Part B: Biochem. Mol. Biol. V. 128. № 3. P. 435. https://doi.org/10.1016/S1096-4959(00)00340-7
  47. Sukhachev A.N., Dyachkov I.S., Romanyuk D.S. et al. 2013. Morphological analysis of hemocytes of ascidian Halocynthia aurantium // Cell Tiss. Biol. (Tsitologiya). V. 55. № 12. P. 901.
  48. Taylor H.H., Paterson B.D., Wong R.J., Wells R.M.G. 1997. Physiology and live transport of lobsters: report from a workshop // Mar. Fresh. Res. V. 48. № 8. P. 817. https://doi.org/10.1071/MF97197
  49. Webster S.G. 1996. Measurement of crustacean hyperglycaemic hormone levels in the edible crab Cancer pagurus during emersion stress // J. Exp Biol. V. 199. № 7. P. 1579. https://doi.org/10.1242/jeb.199.7.1579
  50. Wu M., Chen N., Huang C.X. et al. 2017. Effect of low temperature on globin expression, respiratory metabolic enzyme activities, and gill structure of Litopenaeus vannamei // Biochem. Moscow. V. 82. P. 844. https://doi.org/10.1134/S0006297917070100
  51. Zhang Z.F., Shao M., Kang K.H. 2006. Classifcation of haematopoietic cells and haemocytes in Chinese prawn Fenneropenaeus chinensis // Fish Shellfish Immunol. V. 21. P. 159. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.11.003
  52. Zheng Z., Li F., Li H. et al. 2021. Rapid regulation of hemocyte homeostasis in crayfish and its manipulation by viral infection // Fish and Shellfish Immunol. Reports. № 2. P. 100 035 https://doi.org/10.1016/j.fsirep.2021.100035

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2.

Скачать (186KB)
Метаданные
3.

Скачать (100KB)
Метаданные

© Д.Н. Скафарь, О.В. Стрелкова, Д.В. Шумейко, 2023