Температурная адаптация в постэмбриональном развитии скребня Acanthocephalus tenuirostris (Palaeacanthocephala: Echinorhynchidae)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В экспериментальных условиях исследовано личиночное развитие паразита рыб, скребня Acanthocephalus tenuirostris, распространенного в восточных регионах России от Приморья до верховьев р. Колыма. Материал для опытов был собран в разных районах Магаданской обл., бóльшая часть которой находится в зоне субарктического климата. В нескольких сериях экспериментов заражение и содержание промежуточных хозяев скребня, водяных осликов Asellus hilgendorfii, проходило при постоянной температуре 15°С. Во всех случаях для формирования окончательной стадии развития – цистаканта – требовалось ≤ 45 сут. Одновременно с цистакантами в полости тела осликов присутствовало большое количество личинок более ранних стадий развития. Дополнительный эксперимент, проходивший первые 45 сут при 15°С и следующие 207 сут при 4–6°С, показал возможность дальнейшего развития личинок при пониженных температурах. Сравнение вновь полученных данных и литературных сведений о сроках развития европейских видов рода Acanthocephalus, обитающих в условиях умеренного климата, позволило сделать вывод о наличии температурной адаптации у A. tenuirostris к холодному климату, что обеспечивает двукратное ускорение скорости его ларвогенеза относительно A. lucii в Европе.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. И. Михайлова

Институт биологических проблем Севера Дальневосточного отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: emmodus@gmail.com
Россия, Магадан

Список литературы

  1. Андрюк Л.В. 1979а. Цикл развития скребня Acanthocephalus lucii (Echinorhynchidae) // Паразитология. Т. 13. № 5. С. 530.
  2. Андрюк Л.В. 1979б. Цикл развития скребня Acanthocephalus anguillae // Зоол. журн. Т. 58. № 2. С. 168.
  3. Атрашкевич Г.И. 1998. Природные очаги акантоцефалезов пресноводных рыб в Северном Приохотье // Состояние водных экосистем Сибири и перспективы их использования: Матер. науч. чтений, посвященных памяти проф. Б.Г. Иоганзена. Томск: ООО Дельтаплан. С. 255.
  4. Атрашкевич Г.И. 2009. Скребни (Acanthocephala) в бассейне Охотского моря: таксономическое и экологическое разнообразие // Тр. Зоол. ин-та РАН. СПб. Т. 313. № 3. С. 350.
  5. Атрашкевич Г.И. 2016. Скребни рода Acanthocephalus (Palaeacanthocephala: Echinorhynchidae) – северные или южные “пришельцы”? // Фауна и экология паразитов (Тр. Центра паразитологии ИПЭЭ РАН). М.: Наука. Т. 49. С. 9.
  6. Атрашкевич Г.И., Михайлова Е.И., Орловская О.М., Поспехов В.В. 2016. Биоразнообразие скребней рыб пресных вод азиатской Субарктики // Паразитология. Т. 50. № 4. С. 263.
  7. Вербицкий В.Б. 2012. Температурный оптимум, преферендум и термотолерантность пресноводных ракообразных (Cladocera, Isopoda, Amphipoda): Автореф. дис. … докт. биол. наук. Борок.
  8. Винберг Г.Г. 1987. Зависимость скорости онтогенетического развития от температуры // Продукционно-гидробиологические исследования водных экосистем // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. Л.: Наука. Т. 165. С. 5.
  9. Гидрологический ежегодник. 1969. Бассейн Тихого океана. Бассейн р. Уссури и бассейн Японского моря. Владивосток. Т. 9. Вып. 6.
  10. Давыденко Е.В., Никишин В.П. 2023. Особенности организации тегумента у цистаканта и взрослого скребня Acanthocephalus tenuirostris // Биология внутр. вод. № 2. С. 164. https://doi.org/10.31857/S0320965223020043
  11. Ермоленко А.В. 2004. Фауна паразитов головешки ротана Perccottus glehni (Eleotridae) Приморского края // Паразитология. Т. 38. Вып. 3. С. 251.
  12. Ефремова Т.В., Пальшин Н.И., Белашев Б.З. 2016. Температура воды разнотипных озер Карелии в условиях изменения климата (по данным инструментальных измерений 1953–2011 гг.) // Водн. ресурсы. Т. 43. № 2. С. 228.
  13. Здоровеннова Г.Э., Здоровеннов Р.Э., Пальшин Н.И., Тержевик А.Ю. 2017. Динамика температуры и растворенного кислорода в мелководном озере на фоне погодной изменчивости // Уч. зап. Петрозаводск. гос. ун-та. № 8(169). С. 106.
  14. Курбанов М.Н. 1978. Развитие Acanthocephalus ranae (Schrank, 1788) Lühe, 1911 в промежуточном хозяине // Изв. АН АзерССР. Сер. биол. наук. № 1. С. 114.
  15. Михайлов В.М. 2013. Пойменные талики Северо-Востока России. Новосибирск: Акад. изд-во “Гео”.
  16. Михайлова Е.И. 2015. Скребни рода Neoechinorhynchus (Acanthocephales: Neoechinorhynchidae) северо-восточной Азии (таксономия, зоогеография, экология): Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб.: Зоол. ин-т РАН.
  17. Многолетние данные о режиме и ресурсах поверхностных вод суши (Государственный водный кадастр). 1985. Т. 1. Вып. 17. Л.: Гидрометеоиздат.
  18. Никишин В.П., Леонов С.А. 2000. Гельминты промысловых рыб бассейна Буюнды. Препринт Магадан: Изд-во СВНЦ ДВО РАН.
  19. Петроченко В.И. 1956. Акантоцефалы (скребни) домашних и диких животных. Т. 1. М.: АН СССР.
  20. Поддубный С.А., Цветков А.И., Иванова И.Н. и др. 2020. Термические и динамические процессы в озере Плещеево // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. Вып. 90(93). С. 7.
  21. Поспехов В.В. 2013. Гельминты и паразитические ракообразные рыб озерно-речной системы Чукча (бассейн р. Тауй, Охотское море) // Изв. ТИНРО: Сб. науч. трудов. Владивосток. Т. 172. С. 181.
  22. Поспехов В.В., Атрашкевич Г.И., Орловская О.М. 2009. Гельминтофауна лососевых рыб (Salmonidae) северного Охотоморья (бассейны рек Тауй и Яма) Сообщение 1. Гельминты тихоокеанских лососей // Вестн. СВНЦ ДВО РАН. № 1. С. 93.
  23. Пугачев О.Н. 1984. Паразиты пресноводных рыб северо-востока Азии. Л.: Зоол. ин-т АН СССР.
  24. Пугачев О.Н. 2004. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии. Нематоды, скребни, пиявки, моллюски, ракообразные, клещи // Тр. Зоол. ин-та РАН. Т. 304. СПб.
  25. Ресурсы поверхностных вод СССР. Основные гидрологические характеристики. Дальний Восток. 1967. Т. 18. Вып. 2. Л.: Гидрометеоиздат.
  26. Серов В.Г. 1986. Asellus aquaticus – промежуточный хозяин скребня Acanthocephalus lucii: динамика численности, структура популяции и зараженность скребнем // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. Л.: Наука. Т. 155. С. 13.
  27. Соколов С.Г., Фролов Е.В. 2012. Разнообразие паразитов ротана (Perccottus glenii, Osteichthyes, Odontobutidae) в границах нативного ареала // Зоол. журн. Т. 91. № 1. С. 17.
  28. Соколовская И.Л. 1962. Акантоцефалы. Определитель паразитов пресноводных рыб СССР. М.: АН СССР. С. 579.
  29. Соколовская И.Л. 1971. Скребни рыб бассейна Амура // Паразитол. сборник. Т. 25. Л.: Зоол. ин-т АН СССР. С. 165.
  30. Справочник по климату СССР. 1966–1968. Вып. 33. Ч. I–IV. Л.: Гидрометеоиздат.
  31. Стрелков Ю.А., Шульман С.С. 1971. Эколого-фаунистический анализ паразитов рыб Амура // Паразитол. сборник. Т. 25. Л.: Зоол. ин-т АН СССР. С. 196.
  32. Amin O.M. 2013. Classification of the Acanthocephala // Folia Parasitol. V. 60. № 4. P. 273.
  33. Brattey J. 1986. Life history and population biology of larval Acanthocephalus lucii (Acanthocephala: Echinorhynchidae) in the isopod Asellus aquaticus // J. Parasitol. V. 72. № 5. P. 633.
  34. Heckmann R.A., Amin O.M., Tepe Y. et al. 2011. Acanthocephalus ranae (Acanthocephala: Echinorhynchidae) from amphibians in Turkey, with special reference to new morphological features revealed by SEM, and histopathology // Sci. Parasitol. V. 12. № 1. P. 23.
  35. Sidorov D.A., Prevorčnik S. 2016. A review of the genus Asellus E.L. Geoffroy, 1762 (Crustacea: Isopoda: Asellidae) from the Asian part of Russia, with description of plesiomorphic A. turanaicus sp.n. // Arthropoda Selecta. V. 25. № 2. P. 157.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Участок кишечника водяного ослика Asellus hilgendorfii с личинками Acanthocephalus tenuirostris разных стадий развития в возрасте 45 сут.

Скачать (219KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Начальные стадии личиночного развития Acanthocephalus tenuirostris из промежуточного хозяина через 45 сут после заражения: а – ранняя акантелла; б – средняя акантелла.

Скачать (180KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Продвинутые стадии личиночного развития Acanthocephalus tenuirostris из промежуточного хозяина через 45 сут после заражения: а – поздняя акантелла (начальный этап дифференциации зачатков); б – поздняя акнтелла (заключительный этап органогенеза); в – сформированный цистакант; г – циста с сократившимся цистакантом.

Скачать (324KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024